مطالعه مقایسه روش های انتقال ژن غیر ویروسی به سلول های بنیادی مزانشیمی مشتق از بافت چربی

تاریخ انتشار: چهارشنبه 12 شهریور 1393 | امتیاز: Article Rating

سلول های بنیادی مزانشیمی پتانسیل فوق العاده ای برای استفاده های درمانی در ژن درمانی مبتنی بر سلول های بنیادی دارند. در شرایط ازمایشگاهی اصلاح ژنتیکی سلول های بنیادی مزانشیمی با ژن های سودمند مورد نظریک پیش نیاز برای استفاده موفقیت آمیز از برنامه های درمانی مبتنی بر سلول های بنیادی است. با این حال، دستکاری ژنتیکی سلول های بنیادی مزانشیمی چالش برانگیز است چرا که آنها در برابر روش های معمول مورد استفاده برای انتقال خارج ژنی  RNAو DNA مقاوم می باشند. در اینجا ما اثر چندین روش (رسوب کلاسیک فسفات کلسیم، پلیمر کاتیونی و الکتروپورشن استاندارد) را با فن آوری میکروپورشن برای انتقال پلاسمید کدکننده آنژیوپویتین-1(ANGPT-1)  و پروتئین فلورسنت سبز (EGFP) به سلول های بنیادی مزانشیمی مشتق از بافت چربی انسان (hAD-MSCs) مقایسه می کنیم. روش microporation راندمان انتقال بالاتری، با بیش از 50٪ از سلول های بنیادی مزانشیمی زنده انتقال یافته داشت درمقایسه با روش های انتقال دیگر که در آنها کمتر از 1٪ از سلول ها برای بیان پروتئین فلورسنت سبز پس ازانتقال مثبت بودند. قابلیت سلول ها درتکثیر و تمایز به سه رده بزرگ (سلولهای استخوانی،غضروفی، چربی) مستقل از نوع روش مورد استفاده برای انتقال بود. این نتایج نشان می دهد که روش microporation از نظر توانایی برای ترانسفکشن سلول های بنیادی مزانشیمی مشتق از بافت چربی بدون تاثیر بر توانایی تکثیر و تمایز آنها  نسبت به دیگرروش ها برتری دارد. بنابراین، این مطالعه پایه ای را برای انتخاب تکنیک های مورد استفاده برای دستکاری ژن های داخل بدن در ژن درمانی برمبنای سلول با سلول های بنیادی مزانشیمی به عنوان وسیله ای برای انتقال ژن فراهم می کند .

Int J Mol Sci. 2014 Aug 26;15(9):15044-60. doi: 10.3390/ijms150915044.

A comparative study of non-viral gene delivery techniques to human adipose-derivedmesenchymal stem cell.

Halim NS1Fakiruddin KS2Ali SA3Yahaya BH4.

 

Abstract

Mesenchymal stem cells (MSCs) hold tremendous potential for therapeutic use in stem cell-based gene therapy. Ex vivo genetic modification of MSCs with beneficial genes of interest is a prerequisite for successful use of stem cell-based therapeutic applications. However, genetic manipulation of MSCs is challenging because they are resistant to commonly used methods to introduce exogenous DNA or RNA. Herein we compared the effectiveness of several techniques (classic calcium phosphate precipitation, cationic polymer, and standard electroporation) with that of microporation technology to introduce the plasmid encoding for angiopoietin-1 (ANGPT-1) and enhanced green fluorescent protein (eGFP) into human adipose-derived MSCs (hAD-MSCs). The microporation technique had a higher transfection efficiency, with up to 50% of the viable hAD-MSCs being transfected, compared to the other transfection techniques, for which less than 1% of cells were positive for eGFP expression following transfection. The capability of cells to proliferate and differentiate into three major lineages (chondrocytes, adipocytes, and osteocytes) was found to be independent of the technique used for transfection. These results show that the microporation technique is superior to the others in terms of its ability to transfect hAD-MSCs without affecting their proliferation and differentiation capabilities. Therefore, this study provides a foundation for the selection of techniques when using ex vivo gene manipulation for cell-based gene therapy with MSCs as the vehicle for gene delivery.

PMID: 25162825
فایل های پیوستی
ثبت امتیاز
نظرات
در حال حاضر هیچ نظری ثبت نشده است. شما می توانید اولین نفری باشید که نظر می دهید.
ارسال نظر جدید

تصویر امنیتی
کد امنیتی را وارد نمایید:

آرشیو سالانه
آرشیو سالانه
نظرات خوانندگان
نظرات خوانندگان